RNA-Seq

前期准备

设置代理

alias proxy='export all_proxy=socks5://127.0.0.1:1086'
alias unproxy='unset all_proxy'
proxy
curl cip.cc

环境创建

# 创建名为rna的软件安装环境
# 查看当前conda环境
# 激活conda的rna环境
# 注销当前的rna环境
conda info --envs 
source activate base 
#source deactivate 

软件安装

# conda search 搜索包
# conda install 装包conda search sratools
#conda install -y sra-tools
conda install -y trimmomatic
conda install -y cutadapt multiqc 
conda install -y trim-galore
conda install -y star hisat2 bowtie2 samtools 
conda install -y subread tophat htseq bedtools deeptools
conda install -y salmon

下载数据

ascp -QT -l 300m -P33001  -i ${wkd}/asperaweb_id_dsa.openssh \era-fasp@fasp.sra.ebi.ac.uk:sra/sra-instant/reads/ByRun/sra/SRR/SRR358/SRR3589958/SRR3589958.sra  ./
wkd=/Volumes/Lexar/project #设置工作目录mkdir dataset && cd datasetcat SRR_Acc_List.txt | while read id; do (prefetch  ${id} );done

Sra 数据转换

默认是双端测序

若单端要查函数具体用法

for i in $wkd/dataset/*sra
doecho $ifastq-dump --split-3 --skip-technical --clip --gzip $i  
done

检查测序质量

# -t 是线程，理论上是越大越好，之前设置24直接被kill所以小一点
wkd=$PWD #设置工作目录
mkdir qc_out
fastqc $wkd/dataset/*.gz -t 6 -o $wkd/qc_out/multiqc $wkd/dataset/ -o $wkd/qc_out/

过滤和去街头

用时2个小时

#PH7D-10_S10_L001_R1_001.fastq.gz 
#PH7D-10_S10_L001_R2_001.fastq.gzmkdir $wkd/clean && cd $wkd/clean
ls $wkd/seq/*_R1_001.fastq.gz >1
ls $wkd/seq/*_R2_001.fastq.gz >2
paste 1 2  > config
chmod 777 qc.sh 

---

Qc 脚本 sh

# Global variable
#########################################################
wkd='/Volumes/Lexar/project'
source activate base
bin_trim_galore=trim_galore
dir=${wkd}/clean#########################################################
# Main program 
#########################################################
start=$(date +%s) #脚本启始时间
echo '脚本开始执行'
#########################################################cat $1 |while read id
doarr=(${id})fq1=${arr[0]}fq2=${arr[1]} $bin_trim_galore -q 25 --phred33 --length 36 -e 0.1 --stringency 3 --paired -o $dir  $fq1 $fq2  
done source deactivate #########################################################
end=$(date +%s) #脚本终止时间
take=$(( end - start ))
h=$(( take / 3600 ))
m=$((( take - 3600 * h ) / 60 ))
s=$((( take - 3600 * h - 60 * m )))
echo 脚本运行完毕用时 ${h} 小时 ${m} 分钟 ${s} 秒
#########################################################

---

比对代码

cd $wkd/clean ls *gz|cut -d"_" -f 1 |sort -u |while read id;do
ls -lh ${id}_1_val_1.fq.gz   ${id}_2_val_2.fq.gz 
hisat2 -p 10 -x /public/reference/index/hisat/hg38/genome -1 ${id}_1_val_1.fq.gz -2 ${id}_2_val_2.fq.gz  -S ${id}.hisat.sam;done 

转换

ls *.sam|while read id ;do (samtools sort -O bam -@ 5  -o $(basename ${id} ".sam").bam   ${id});done
rm *.sam 

简历索引和统计

ls *.bam |xargs -i samtools index {}
ls *.bam |while read id ;do ( samtools flagstat -@ 1 $id >  $(basename ${id} ".bam").flagstat  );done

整合

mkdir $wkd/align 
cd $wkd/align 
# 如果一个个样本单独计数，输出多个文件使用代码是：
for fn in {508..523}
do
featureCounts -T 5 -p -t exon -g gene_id  -a /public/reference/gtf/gencode/gencode.v25.annotation.gtf.gz -o $fn.counts.txt SRR1039$fn.bam
done
# 如果是批量样本的bam进行计数，使用代码是：
mkdir $wkd/align 
cd $wkd/align 
source activate rna
gtf="/public/reference/gtf/gencode/gencode.v25.annotation.gtf.gz"   
featureCounts -T 5 -p -t exon -g gene_id  -a $gtf -o  all.id.txt  *.bam  1>counts.id.log 2>&1 &
# 这样得到的  all.id.txt  文件就是表达矩阵啦，但是，这个 featureCounts有非常多的参数可以调整。
source deactivate